Нарушения в репродуктивной системе при экспериментальном моделировании туберкулеза
https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-2-52-56
Аннотация
Об авторах
С. И. КаюковаРоссия
кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник фтизиатрического отдела
107564, Москва, Яузская аллея, д. 2
Н. В. Стержанова
Россия
аспирант иммунологического отдела
107564, Москва, Яузская аллея, д. 2
Б. В. Никоненко
Россия
ведущий научный сотрудник иммунологического отдела
107564, Москва, Яузская аллея, д. 2
Список литературы
1. Адинцова С. А. Роль эндокринного и аутоиммунного компонентов в патогенезе и клинике туберкулеза женских половых органов (клинико-экспериментальное исследование): Автореф. дис. … д-ра мед. наук. ‒ М., 1973. – 37 с.
2. Блохин Н. Н., Кузавова Н. И., Беляшева Т. В., Момот Д. С. Экспериментальная модель генитального туберкулеза у кроликов // Пробл. туб. – 1973. – Т. 51, № 9. – С. 86-87.
3. Бушмелева П. В. Новые экспериментальные модели для биологической пробы при диагностике туберкулеза сельскохозяйственных животных: Автореф. дис. … канд. биол. наук. – Новосибирск, 2011. – 22 с.
4. Витовская М. Л., Виноградова Т. И., Заболотных Н. В., Добровольская О. А., Федорова Е. А., Черняева Е. К., Духовлинов И. В., Симбирцев А. С. Протективная способность кандидатной вакцины, содержащей рекомбинантный белок TB10.4, в экспрессионной системе клеток Е. coli при экспериментальном туберкулезе // Медицинская иммунология. – 2015. – Т. 17. ‒ Иммунология туберкулеза. Специальный выпуск. – 16 с.
5. Доброклонский В. И. Возможно ли проникновение бугорчатой заразы в тело через половые органы // Врач. – 1895. – Т. 16, № 19. – С. 521-523, 552-567.
6. Еремеев В. В., Евстифеев В. В., Поспелов А. Л., Орлова С. Ю., Kaufmann S. H. E. Изучение влияния дефицит сапозина D на течение туберкулезной инфекции в экспериментальной модели // Медицинская иммунология. – 2015. – Т. 17. ‒ Иммунология туберкулеза. Специальный выпуск. – 16 с.
7. Каюкова С. И., Донников А. Е., Бочарова И. В., Туманова Е. Л., Гергерт В. Я., Эргешов А. Э., Никоненко Б. В. Изменение микробиоты и развитие неспецифического воспаления в половых органах самок мышей инбредной линии С57BL/6 при аэрозольном инфицировании Mycobacterium tuberculosis // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 2019. – Т. 167, № 15. – С. 586-590.
8. Ноздрачев А. Д., Поляков Е. Л., Маслюков П. М. Анатомия лабораторной мыши // Санкт-Петербург. – 2012. – С. 139-154.
9. Осовская А. М., Суркова Л. К. Модель экспериментального генитального туберкулеза. // Пробл. туб. – 1973. – Т. 51, № 9. – С. 75-78.
10. Руководство по эндокринной гинекологии / Под ред. Вихляевой Е. М. – М. МИА. – 3-е издание. – 2006 г. – 784 с.
11. Сухих Г. Т., Бочарова И. В., Донников А. Е., Лепеха Л. Н., Демихова О. В., Уварова Е. В., Березовский Ю. С., Смирнова Т. Г. Особенности воспалительного процесса репродуктивных органов самок мышей С57BL/6 при экспериментальном туберкулезе // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 2015. – Т. 160, № 12. – С. 754-758. https://doi: 10.1007/s10517-016-3310-9.
12. Andries K., Verhasselt P., Guillemont J., Göhlmann H. W., Neefs J. M., Winkler H., Van Gestel J., Timmerman P., Zhu M., Lee E., Williams P., de Chaffoy D., Huitric E., Hoffner S., Cambau E., Truffot-Pernot C., Lounis N., Jarlier V. A diarylquinoline drug active on the ATP synthase of Mycobacterium tuberculosis // Science. – 2005. – Vol. 307 (5707). – Р. 223-227.
13. An online Atlas of the private histology of the laboratory mouse. http://ctrgenpath.net/static/atlas/mousehistology.
14. Apt A. S. Are mouse models of human mycobacterial diseases relevant? Genetics says: «yes!» // Immunology. – 2011. – № 134. – Р. 109-115.
15. Apt A., Kramnik I. Man and mouse TB: contradictions and solutions // Tuberculosis (Edinb). –2009. – № 89. – Р. 195-198.
16. Clarke I. J., Cummins J. T. The temporal relationship between gonadotropin releasing hormone (GnRH) and luteinizing hormone (LH) secretion in ovariectomized ewes // Endocrinology. –1982. – Vol. 111, № 5. – Р. 1737-1739.
17. Cook M. J. The Anatomy of the Laboratory Mouse, Academic Press, 1965. http://www.informatics.jax.org/cookbook.
18. Daniel N., Lounis N., Ji B. et al. Antituberculosis activity of once weekly rifapentine-containing regimens in mice // Am. J. Respir. Crit. Care Med. – 2000. – № 161. – Р. 1572-1577.
19. Episodic Hormone Secretion (from Basic Science to Clinical Application) / Eds. T. Wagner, M. Filicori. – Hamelin: TM-Verlag, 1987. – 260 p.
20. Eruslanov E. B., Lyadova I. V., Kondratieva T. K., Majorov K. B., Scheglov I. V., Orlova M. O., Apt A. S. 2005. Neutrophil responses to Mycobacterium tuberculosis infection in genetically susceptible and resistant mice // Infect. Immun. – № 73. – Р. 1744-1753.
21. Flynn J. L., Gideon H. P., Mattila J. T., Lin P. L. Immunology studies in non-human primate models of tuberculosis // Immunol. Rev. ‒ 2015. ‒ № 264. ‒ Р. 60-73. doi: 10.1111/imr.12258.
22. Frith C. H., Ward J. M. Color atlas of neoplasic and non neoplastic lesions in aging mice elsevier. – 1988. // Http://Www.Informatics.Jax. org/frithbook/index.shtml.
23. Grace G. A., Devaleenal D. B., Natrajan M. Genital tuberculosis in females // Ind. J. Med. Res. – 2017. – № 145. – Р. 425-436. doi: 10.4103/ijmr.IJMR_1550_15.
24. Gueno G. Nedeltchev, Tirumalai R. Raghunand, Mandeep S. Jassal et al. Extrapulmonary dissemination of Mycobacterium bovis but not Mycobacterium tuberculosis in a bronchoscopic rabbit model of cavitary tuberculosis // Infect. Immun. – 2009. – Vol. 77, № 2. – Р. 598-603.
25. Gupta U. D., Katoch V. M. Animal models of tuberculosis // Tuberculosis (Edinb). – 2005. – Vol. 85, № 5-6. – P. 277-293.
26. Hübner M. P., Killoran K. E., Rajnik M., Wilson S., Yim K. C., Torrero M. N., Morris C. P., Nikonenko B., Blanco J. C., Hemming V. G., Mitre E. Chronic helminth infection does not exacerbate Mycobacterium tuberculosis infection // PLoS Negl. Trop. Dis. ‒ 2012. – № 6. ‒ Р. e1970. doi: 10.1371/journal.pntd.0001970.
27. Jeevan A., Yoshimura T., Foster G., McMurray D. N. Effect of Mycobacterium bovis BCG vaccination on interleukin-1 beta and RANTES mRNA expression in guinea pig cells exposed to attenuated and virulent mycobacteria // Infect. Immun. – 2002. – Vol. 70. – P. 1245-1253.
28. Kapina M. A., Shepelkova G. S., Avdeenko V. G., Guseva A. N., Kondratieva T. K., Evstifeev V. V., Apt A. S. 2011. Interleukin-11 drives early lung inflammation during Mycobacterium tuberculosis infection in genetically susceptible mice // PLoS One. – 2011. – Vol. 6, № 7. – P. e21878.
29. Kramnik I. Genetic dissection of host resistance to Mycobacterium tuberculosis: the sst1 locus and the Ipr1 gene // Curr. Top. Microbiol. Immunol. – 2008. – Vol. 321. – P. 123-148.
30. Kramnik I., Dietrich W. F., Demant P., Bloom B. R. Genetic control of resistance to experimental infection with virulent Mycobacterium tuberculosis // Proc. Natl. Acad. Sci. (U SA). – 2000. – Vol. 97, № 15. – P. 8560-8565.
31. Logunova N., Korotetskaya M., Polshakov V., Apt A. The QTL within the H2 complex involved in the control of tuberculosis infection in mice is the classical class II H2-Ab1 gene // PLoS Genet. – 2015. – Vol. 11, № 11. ‒ Р. e1005672. doi: 10.1371/journal.pgen.1005672.
32. Lyadova I. V., Tsiganov E. N., Kapina M. A., Shepelkova G. S., Sosunov V. V., Radaeva T. V., Majorov K. B., Shmitova N. S., van den Ham H. J., Ganusov V. V., De Boer R. J., Racine R., Winslow G. M. In mice, tuberculosis progression is associated with intensive inflammatory response and the accumulation of Gr-1 cells in the lungs // PLoS One. – 2010. – Vol. 5, № 5. – Р. e10469.
33. Mitsos L. M., Cardon L. R., Fortin A., Ryan L., LaCourse R., North R. J., Gros P. Genetic control of susceptibility to infection with Mycobacterium tuberculosis in mice // Genes Immun. – 2000. – № 1. – Р. 467-477.
34. Mitsos L. M., Cardon L. R., Ryan L., LaCourse R., North R. J., Gros P. Susceptibility to tuberculosis: a locus on mouse chromosome 19 (Trl-4) regulates Mycobacterium tuberculosis replication in the lungs // Proc. Natl. Acad. Sci USA. – 2003. – № 100. – Р. 6610-6615.
35. Nikonenko B. V., Apt A. S. Drug testing in mouse models of tuberculosis and nontuberculous mycobacterial infections // Tuberculosis (Edinb). – 2013. – № 93. – Р. 285-290. Review.
36. Nikonenko B., Reddy V. M., Bogatcheva E., Protopopova M., Einck L., Nacy C. A. Therapeutic efficacy of SQ641-NE against Mycobacterium tuberculosis // Antimicrob. Agents Chemother. – 2014. – № 58. – Р. 587-589.
37. Orme I. M. The mouse as a useful model of tuberculosis // Tuberculosis (Edinb). – 2003. – № 83. – Р. 12-15.
38. Orme I. M. Mouse and guinea pig models for testing new tuberculosis vaccines // Tuberculosis (Edinb). – 2005. – № 85. – Р. 13-17.
39. Palanisamy G. S., Smith E. E., Shanley C. A., Ordway D. J., Orme I. M., Basaraba R. J. Disseminated disease severity as a measure of virulence of Mycobacterium tuberculosis in the guinea pig mode // Tuberculosis (Edinb). ‒ 2008. – № 88. – Р. 295-306. doi: 10.1016/j.tube.2007.12.003.
40. Pan H., Yan B. S., Rojas M., Shebzukhov Y. V., Zhou H., Kobzik L., Higgins D. E., Daly M. J., Bloom B. R., Kramnik I. Ipr1 gene mediates innate immunity to tuberculosis // Nature. – 2005. – № 434. – Р. 767-772.
41. Sánchez F., Radaeva T. V., Nikonenko B. V., Persson A. S., Sengul S., Schalling M., Schurr E., Apt A. S., Lavebratt C. Multigenic control of disease severity after virulent Mycobacterium tuberculosis infection in mice // Infect. Immun. – 2003. – № 71. – Р. 126-131.
42. Shayakhmetova G. M., Bondarenko L. B., Kovalenko V. M. Damage of testicular cell macromolecules and reproductive capacity of male rats following co-administration of ethambutol, rifampicin, isoniazid and pyrazinamide // Interdiscip. Toxicol. – 2012. – 5, № 1. – Р. 9-14.
43. Shepelkova G., Evstifeev V., Majorov K., Bocharova I., Apt A. Therapeutic effect of recombinant mutated interleukin 11 in the mouse model of tuberculosis // J. Infect. Dis. – 2016. – Vol. 214, № 3. – Р. 496-501. doi: 10.1093/infdis/jiw176.
44. Subbian S., Tsenova L., Yang G., O’Brien P., Parsons S., Peixoto B., Taylor L., Fallows D., Kaplan G. Chronic pulmonary cavitary tuberculosis in rabbits: a failed host immune response. Open Biol. – 2011. – № 1. – Р. 110016. http://dx.doi.org/10.1098/rsob.110016.
45. Suckow M. A., Danneman P., Brayton C. The laboratory mouse Boca Raton., 2007. The laboratory mouse / eds H. J. Hedrich, G. Bullock. – New York. – 2004.
46. Winglee K., Eloe-Fadrosh E., Gupta S., Guo H., Fraser C., Bishai W. Aerosol Mycobacterium tuberculosis infection causes rapid loss of diversity in gut microbiota // PLoS One. – 2014. – Vol. 9, № 5. – Р. e97048.
Рецензия
Для цитирования:
Каюкова С.И., Стержанова Н.В., Никоненко Б.В. Нарушения в репродуктивной системе при экспериментальном моделировании туберкулеза. Туберкулез и болезни легких. 2020;98(2):52-56. https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-2-52-56
For citation:
Kayukova S.I., Sterzhanova N.V., Nikonenko B.V. Reproductive disorders in the experimental modeling of tuberculosis. Tuberculosis and Lung Diseases. 2020;98(2):52-56. (In Russ.) https://doi.org/10.21292/2075-1230-2020-98-2-52-56